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杭州师范大学刘俊秋/闫腾飞团队Angew. Chem. Int. Ed.,基于喹啉螺旋的温敏型H+/Cl-共转运人工双离子通道实现肿瘤的高效抑制 |
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论文信息

天然通道蛋白能够实现对离子的高特异性与门控跨膜运输,人工离子通道的开发旨在模拟其独特的生理功能,以克服天然蛋白提取复杂、应用受限等不足。尽管已有基于大环(如冠醚、柱芳烃等)的人工系统实现了对阳离子或阴离子的选择性识别与运输,并在门控响应性方面取得进展,但多数系统仍局限于单一离子运输,难以模拟天然通道中多离子协同完成复杂生理功能的行为。如何将阳离子/阴离子协同运输与环境响应性整合于同一人工通道体系,仍是该领域面临的重要挑战。

图1 温敏型人工双离子通道抗癌示意图
杭州师范大学刘俊秋、闫腾飞团队设计了一种具有高效传输能力的温敏型H+/Cl-共转运人工双离子通道,能够同时对H+和Cl-高效跨膜传递,实现对肿瘤细胞(IC50 = 0.14 μM)的高效抑制,为人工通道在癌症治疗中的应用提供新思路(图1)。相关成果发表在Angew. Chem. Int. Ed.上。根据该团队之前报道过一种经典喹啉螺旋,其构象主要由酰胺N-H与喹啉N原子之间的分子内氢键所稳定。该螺旋结构中,酰胺键与喹啉N原子共同构筑了连续的氢键网络,形成孔径约为0.1 nm的质子传导通道,为跨膜质子运输提供了高效通路 (Nano Lett.2021, 21, 10462–10468)。本文在此基础上,引入3,5-双(三氟甲基)苯基异硫氰酸酯。随后形成的硫脲基团分布在螺旋两侧,作为Cl-的连续结合位点,最终获得人工双离子通道P2。通过MALDI-TOF质谱、凝胶渗透色谱 (GPC)、红外光谱法对P2进行了表征。为研究P2的跨膜离子运输活性,本研究采用pH敏感性荧光探针HPTS,通过建立跨膜pH梯度监测离子运输过程。实验表明,P2不传输碱金属阳离子,EC50为9.84 pM (图2a);阴离子选择性顺序为NO3- > Br- > Cl- > SO42-。SPQ实验进一步证实P2介导高效的Cl-运输,EC50为0.6 μM (图2b,c)。机制研究表明,FCCP未显著改变荧光强度,表明H+运输快于Cl-,而缬氨霉素实验显示Cl-运输优先于OH-,两者共同表明P2通过H+/Cl-同向协同转运机制发挥作用 (图2d,e)。CF染料泄漏实验证实P2不破坏膜完整性,而是通过形成跨膜单分子孔道介导离子运输 (图2f)。

图2 离子通道输运活性及机制研究
为验证P2的温度响应特性,考察了不同温度下其离子传输活性的变化。利用HPTS荧光探针结合温度循环水泵精确控温,发现P2的H+传输速率随温度升高显著增加,且对照实验排除了温度对囊泡稳定性的干扰。同时,SPQ实验也证实Cl-传输表现出类似的温度依赖性增强。进一步通过37°C与5°C的循环切换实验,P2展现出可逆的温度门控开关行为,在37°C时活性较高,降至5°C时显著下降,且该动态传输特性可稳定循环三次以上而无疲劳效应,确认了P2具备良好的温度可逆响应性。为验证P2是否具备自组装成离子通道的能力,构建了平面脂质双层膜系统,并进行了电生理记录实验,当温度从5°C升至37°C时,氯离子单通道电导率(γCl-)显著上升,从11.6 pS升至48.3 pS,表明高温有效提升了跨膜离子传输效率。基于P2优异的H+/Cl-同向协同转运性能,进一步探究了其抗癌潜力。研究选用多种癌细胞系 (4T1、A549、U-87 MG) 进行CCK-8实验。结果表明,P2对癌细胞表现出显著的细胞毒性,尤其对U-87 MG细胞效果最佳 (IC50 = 0.14 μM) (图3a-c)。流式细胞术进一步证实,P2通过H+/Cl-同向协同转运破坏离子稳态,以浓度依赖方式诱导U-87 MG和A549细胞凋亡,凋亡率从5.4%升至94.4% (图3d)。Calcein-AM/PI活死染色结果与CCK-8实验一致,再次验证了P2浓度依赖性地诱导癌细胞死亡。

图3 通过破坏离子稳态诱导癌细胞凋亡。
为验证P2能否介导细胞内Cl-内流,本研究采用Cl-荧光探针MQAE对U-87 MG细胞进行检测。结果显示,加入P2后,细胞内荧光发生明显猝灭,表明P2有效促进了Cl-的跨膜内流 (图4a)。在凋亡机制层面,JC-1探针检测表明P2能够浓度依赖性地诱导线粒体膜电位丧失,伴随ROS水平升高(图4b,e)。进一步免疫荧光染色显示,细胞色素c从线粒体释放至细胞质,表明线粒体通透性转换孔开放,进而激活caspase依赖性凋亡通路 (图4c)。此外,鉴于P2具备H+转运活性且肿瘤细胞溶酶体呈酸性,采用LysoTracker Deep Green探针检测发现P2处理后溶酶体绿色荧光显著减弱 (图4d),证实P2可促进溶酶体质子外流、升高其pH,进而诱导溶酶体膜通透性增加并释放凋亡相关因子至胞质。综上,P2通过介导Cl-内流与H+外排,破坏细胞内离子稳态,并经线粒体和溶酶体双通路协同触发癌细胞凋亡。

图4 细胞凋亡机制
为评估P2的体内抗肿瘤效果,本研究建立BALB/c裸鼠U-87异种移植瘤模型,每两天尾静脉注射P2(0.14,0.40,0.65 μM),连续治疗14天。结果显示,P2呈浓度依赖性地抑制肿瘤生长,肿瘤生长抑制率(TGI)分别为52.9%、69.9%和74.6% (图5c,d);H&E染色进一步证实肿瘤组织出现明显的核碎裂、核溶解等凋亡与坏死特征,而心、肝、脾、肺、肾等主要器官组织结构完整,未见明显炎症或损伤 (图5e)。治疗期间小鼠体重未见异常变化,表明P2具有良好的生物相容性 (图5b)。综上,P2通过介导H+/Cl-同向协同转运破坏肿瘤细胞离子稳态,有效诱导肿瘤细胞死亡,同时展现出较低的体内毒性,具备作为抗肿瘤药物的开发潜力。

图5 P2的体内抗肿瘤效果
期刊介绍

Angewandte Chemie是全球化学领域最具影响力的顶级期刊之一,由Wiley出版,创刊于1887年,最新影响因子为16.9。
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